Дальневосточный трепанг Apostichopus japonicus (Selenka, 1867) – морское донное беспозвоночное животное типа иглокожих, обладающее высокой пищевой и лекарственной ценностью. Дальневосточный трепанг содержит богатый набор биологически активных химических соединений, которые действуют раздельно или в комплексе, обусловливая высокую фармакологическую ценность получаемых из него продуктов. Известно, что различные препараты, полученные из трепанга, применяются для лечения грибковых заболеваний, воспалений скелетной мускулатуры и опорно-двигательного аппарата, а также обладают противоопухолевым и антисклеротическим действием.
В настоящее время добыча гидробионта составляет 20–25 % общего мирового промысла иглокожих, достигая в отдельные годы 13 тысяч тонн. Несмотря на высокую плодовитость животного, запасы дальневосточного трепанга повсеместно сокращаются, и для их восстановления необходимо осуществление комплекса специальных мероприятий. К ним относятся соблюдение режима промысла (квоты вылова, установленных сроков промысла, минимального промыслового размера животных), улучшение естественного воспроизводства трепанга, организация искусственного культивирования.
Искусственное разведение является одним из наиболее действенных методов для пополнения запасов промысловых организмов, хотя и сопряжено с серьёзными техническими трудностями и требует значительных капитальных затрат. По данным литературы известно, что основной проблемой культивирования дальневосточного трепанга в условиях его искусственного воспроизводства является снижение иммунитета гидробионта и его подверженность различным инфекционным заболеваниям. Особенно наблюдается высокая смертность трепанга на ранних стадиях его развития. Наиболее частыми причинами массовой гибели являются заболевания, вызванные такими микроорганизмами, как Vibrio splendidus [1; 2] и Vibrio alginolyticus [3]. Есть упоминания об инфекциях дальневосточного трепанга, возбудителями которых являются Vibrio parahaemolyticus [4], Pseudoalteromonas sp. и Pseudoalteromonas tetraodonis [5].
Для ликвидации вспышек инфекционных заболеваний нередко используют различные антибиотики, что имеет ряд серьезных негативных последствий. Во-первых, морепродукты, содержащие в себе химические препараты, представляют собой угрозу для здоровья человека. Во-вторых, систематическое применение в аквакультуре антибиотиков в дальнейшем приводит к появлению возбудителей инфекционных заболеваний, устойчивых к их действию.
В связи с этим поиск альтернативных технологий выращивания гидробионтов, предполагающих минимальное использование антибиотиков, является актуальной задачей современной аквакультуры. В настоящее время наиболее перспективным способом решения этих проблем является применение пищевых добавок на основе микроорганизмов – представителей нормальной микрофлоры хозяина, так называемых пробиотиков. Пробиотики способны активно действовать на бактериальные патогены, корректировать механизмы иммунной защиты макроорганизма и смягчить влияние неблагоприятных факторов среды, не нанося при этом вред организму хозяина [6].
На сегодняшний день в литературе имеется немало информации о положительном влиянии отдельных видов бактерий [1], дрожжей [2] и бактериофагов [3; 4], полученных из различных источников, на воспроизводство Apostichopus japonicus. В то же время в литературе представлены ограниченные сведения о составе, биохимических свойствах [7; 8] и роли симбионтной микрофлоры дальневосточного трепанга в защите от болезнетворных микроорганизмов [5]. Хотя известно, что для любых животных характерна своя нормальная микрофлора, выполняющая множество функций, в том числе защиту от патогенных микроорганизмов.
В связи с этим цель данной работы – изучить способность бактерий, выделенных из пищеварительного тракта диких особей Apostichopus japonicus, ингибировать рост патогенных вибрионов.
Материалы и методы исследования
Для работы была использована ранее полученная нами коллекция 134 штаммов культивируемых гетеротрофных бактерий, выделенных из пищеварительной системы дальневосточного трепанга из естественной среды обитания [7]. Изучение антагонистических свойств симбионтной микрофлоры трепанга проводили на штаммах Vibrio alginolyticus H1822, Vibrio parahaemolyticus H1845 и Vibrio splendidus Н1802, выделенных из аквакультурных хозяйств.
Определение антибиотикочувствительности. Перед началом работ по изучению антимикробной активности бактерий из пищеварительного тракта дальневосточного трепанга была проведена оценка антибиотикочувствительности патогенных тест-культур. Чувствительность к антибиотикам определяли диско-диффузионным методом на агаре Мюллера-Хинтона (Difco) согласно методическим указаниям Федерального центра госсанэпиднадзора Минздрава России [9] и рекомендациям Института клинических и лабораторных стандартов [10]. Подбор антимикробных соединений вели с учетом современной медицинской и ветеринарной практики. В работе были использованы диски (НИЦФ, Россия): с пенициллинами (ампициллин, амоксициллин + клавулановая кислота), цефалоспоринами (цефазолин, цефотаксим, цефепим), аминогликозидами (гентамицин, канамицин, стрептомицин), хинолонами (ципрофлоксацин, налидиксовая кислота), нитрофуранами (нитрофурантоин), левомицетином и тетрациклином.
Выявление антимикробной активности коллекции симбионтных бактерий из дальневосточного трепанга. Межмикробные взаимодействия изучали методом перпендикулярных штрихов на универсальной агаризованной среде для морских микроорганизмов СММ [11], подходящей для инкубации всех исследуемых микроорганизмов. Вначале по диаметру чашки Петри со средой штрихом высевали штамм бактерии – потенциального продуцента антимикробных веществ. Инкубацию проводили при температуре 22 °С в течение 5 суток. После этого к посеву перпендикулярным штрихом подсевали тест-культуру патогенной бактерии и инкубировали еще в течение 2 суток. О наличии антимикробной активности судили по величине зоны подавления роста тест-культур вблизи посева бактерий-симбионтов, которую выражали в мм. Все опыты повторяли трижды.
Результаты исследования и их обсуждение
Изучение антибиотикочувствительности тест-культур. Вибрионы – обычные обитатели морских и пресноводных экосистем. Некоторые из них могут быть патогенными как для людей, так и для водных животных за счет широкого спектра продуцируемых ими факторов патогенности. В последнее время растет число сообщений о случаях заражения объектов аквакультуры представителями рода Vibrio, что, несомненно, наносит огромный урон товарному выращиванию гидробионтов.
Вид V. splendidus широко распространен в морских экосистемах и долгое время считался не патогенным. Однако в последние годы в аквакультуре зарегистрировано немало случаев вспышек заболеваний, вызванных этим видом, у таких моллюсков, как Pecten maximus, Crassostrea gigas, Octopus vulgaris, и у рыбы тюрбо Scophthalmus maximus [12]. В Китае инфекции, вызванные V. splendidus, являются основной причиной смертности Apostichopus japonicas [1; 2]. К сожалению, пока не существуют достоверных диагностических инструментов для выявления и оценки потенциальной патогенной способности V. splendidus. Исследования рибосом и полиморфизмы гена gyrB или RAPD не привели к выявлению маркеров, связанных с патогенностью. Таким образом, до сих пор нет фенотипических или генотипических особенностей, позволяющих отличать патогенные штаммы от непатогенных. И единственным способом определить вирулентность каждого конкретного штамма остается экспериментальное заражение.
Бактерии V. alginolyticus могут вызывать заболевания человека, но в основном они патогенны для объектов аквакультуры, вызывая массовую гибель как Apostichopus japonicus [3], так и многих видов рыб, моллюсков и ракообразных [13]. Среди их факторов вирулентности можно найти липазы, протеазы, сидерофоры и даже термостабильный прямой гемолизин (ТПГ).
Бактерии вида V. parahaemolyticus в основном считаются патогенными для человека и способны вызывать гастроэнтерит, раневые инфекции и сепсис. Однако есть данные о том, что эти микроорганизмы являются возбудителями острого гепатопанкреатического заболевания (AHPND) у таких видов креветок, как Penaeus vannamei и Penaeus monodon [13]. Также в литературе стали появляться сведения о гибели молоди дальневосточного трепанга, вызванной V. parahaemolyticus [4].
В ходе проведенных нами исследований была изучена антибиотикочувствительность трех штаммов: V. alginolyticus H1822, V. parahaemolyticus H1845 и V. splendidus Н1802, выделенных из аквакультурных хозяйств, где была зарегистрирована высокая смертность дальневосточного трепанга (табл. 1). Установлено, что V. alginolyticus H1822 и V. splendidus Н1802 проявили одинаковую чувствительность к выбранным антимикробным веществам. Так, у этих штаммов отмечалась резистентность к 7 антибиотикам разных классов: ампициллину, цефазолину, цефотаксиму, канамицину, стрептомицину, налидиксовой кислоте, тетрациклину. При этом указанные микроорганизмы были чувствительны к другим бета-лактамам (амоксициллин с клавулановой кислотой, цефепим), аминогликозидам (гентамицин), фторированным хинолонам (ципрофлоксацин), левомицетину и нитрофурантоину. Спектр антибиотикочувствительности V. parahaemolyticus H1845 был немного шире, чем у двух других штаммов вибрионов, что проявлялось в чувствительности также к цефотаксиму и канамицину (табл. 1).
Изучение антимикробной активности коллекции симбионтных бактерий из дальневосточного трепанга. Из 134 штаммов бактерий, выделенных из пищеварительного тракта дикого дальневосточного трепанга, различную степень антимикробной активности в отношении изучаемых тест-культур проявили 11 штаммов (8 %), из них 6 (55 %) – это бактерии рода Bacillus (табл. 2). Необходимо отметить, что представители рода Bacillus составляли 27 % нашей коллекции [7].
Таблица 1
Антибиотикочувствительность патогенных тест-культур
Антибиотик |
V. alginolyticus H1822 |
V. parahaemolyticus H1845 |
V. splendidus H1802 |
Ампициллин |
Р |
Р |
Р |
Амоксициллин + клавуланат |
Ч |
Ч |
Ч |
Цефазолин |
Р |
Р |
Р |
Цефотаксим |
Р |
Ч |
Р |
Цефепим |
Ч |
Ч |
Ч |
Гентамицин |
Ч |
Ч |
Ч |
Канамицин |
Р |
Ч |
Р |
Стрептомицин |
Р |
Р |
Р |
Ципрофлоксацин |
Ч |
Ч |
Ч |
Налидиксовая кислота |
Р |
Р |
Р |
Левомицетин |
Ч |
Ч |
Ч |
Тетрациклин |
Р |
Р |
Р |
Нитрофурантоин |
Ч |
Ч |
Ч |
Примечание: Ч – чувствительный к антибиотику микроорганизм, Р – резистентный к антибиотику микроорганизм.
Таблица 2
Антимикробная активность симбионтной микрофлоры дальневосточного трепанга
Штаммы-продуценты антимикробных соединений |
Зона подавления роста тест-культур, мм |
||
V. alginolyticus H1822 |
V. parahaemolyticus H1845 |
V. splendidus H1802 |
|
Bacillus pumilus A27 |
6 |
– |
– |
Micrococcus sp. K54 |
– |
6 |
– |
Bacillus sp. K33 |
8 |
– |
– |
Micrococcus sp. A34 |
– |
– |
5 |
Bacillus sp. K29 |
7 |
– |
– |
Arthrobacter sp. А16 |
14 |
– |
– |
Kocuria sp. A34 |
11 |
– |
– |
Pseudoalteromonas sp. K59 |
10 |
– |
– |
Bacillus megaterium K13 |
11 |
– |
– |
Bacillus sp. K32 |
15 |
5 |
4 |
Bacillus pumilus K6 |
7 |
– |
– |
Способность угнетать рост штамма V. alginolyticus H1822 показали 9 штаммов симбионтных бактерий (7 %). При этом наибольшие размеры зон подавления роста V. alginolyticus H1822 отмечались на чашках с Bacillus sp. K32 (15 мм) и Arthrobacter sp. А16 (14 мм). Что касается двух других патогенных вибрионов, то незначительное подавление их роста наблюдалось на чашках с Bacillus sp. K32, Micrococcus sp. K54, Micrococcus sp. A34 (табл. 2). Исходя из полученных данных, только штамм Bacillus sp. K32 был активен в отношении всех трех патогенных вибрионов.
Из полученных данных видно, что наибольшую антимикробную активность в отношении исследуемых тест-культур показали штаммы Bacillus sp. K32 и Arthrobacter sp. А16. Согласно литературным данным, представители указанных групп микроорганизмов нередко являются продуцентами антимикробных соединений.
Так, среди антибиотиков, образуемых бациллами, в настоящее время в медицинской практике используются грамицидин С, образуемый B. brevis, и полимиксины М и В, образуемые B. polymyxa. Бактерии рода Bacillus признаны мощным инструментом биоконтроля численности фитопатогенов благодаря способности продуцировать множество вторичных метаболитов различной химической природы: циклических липопептидов, полипептидов, белков и непептидных соединений. Кроме того, представители рода Bacillus нередко применяются в качестве пробиотиков при товарном выращивании Apostichopus japonicus в целях профилактики инфекционных заболеваний гидробионтов, а также для увеличения скорости роста животных [1].
Бактерии рода Arthrobacter также обладают высокой биологической активностью. Так, на основе бактерий Arthrobacter davidanieli создана и запатентована вакцина, снижающая риск возникновения заболеваний атлантического лосося Salmo salar и кижуча Oncorhynchus kisutch от таких инфекционных агентов, как Renibacterium salmoninarum и Piscirickettsia salmonis [14]. Согласно другим данным, бактерии рода Arthrobacter синтезируют антимикробные вещества, подавляющие рост Bacillus cereus, Listeria monocytogenes, Staphylococcus aureus, Salmonella enterica, Aeromonas salmonicida, Vibrio vulnificus, V. parahaemolyticus, V. harveyi, V. anguillarum, Yersinia enterolitica и Y. ruckeri [15].
Заключение
Таким образом, полученные в ходе работы результаты свидетельствуют о высоком потенциале симбионтной микрофлоры дальневосточного трепанга противостоять действию патогенных и условно-патогенных микроорганизмов. Несомненно, большой интерес представляет изучить химическую природу синтезируемых антимикробных веществ для понимания механизмов положительного действия. Полученные данные могут быть полезны как для изучения конкурентных отношений в морских микробных сообществах, так и для решения прикладных задач, таких как создание пробиотических препаратов с антимикробным действием.
Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта № 18-34-00693.