Медь является одним из важнейших эссенциальных микроэлементов. В организме взрослого человека содержание меди составляет примерно 100–200 мг, при этом около 50 % всей меди находится в мышцах, а 10 % в печени. Она служит компонентом ферментов, обладающих окислительно-восстановительной активностью, и участвует во многих окислительно-восстановительных процессах; играет важную роль в метаболизме железа (в образовании гемоглобина и созревании эритроцитов); повышает усвоение белков и углеводов; участвует в синтезе коллагена и обеспечивает формирование соединительной ткани и поддержание ее структуры, росте костей; поддерживает эластичность стенок кровеносных сосудов, альвеол, кожи; обладает выраженным противовоспалительным свойством, в том числе при аутоиммунных заболеваниях [1]. Медь участвует в биохимических процессах как составная часть электронпереносящих белков, осуществляющих реакции окисления органических субстратов молекулярным кислородом (табл. 1).
Таблица 1
Медьсодержащие ферменты человека и животных
Ферменты |
Мr |
Функция |
Источник |
Церулоплазмин (КФ 1.16.3.1.) |
132 000 |
Окисление железа, биогенных аминов, транспорт меди |
Плазма крови животных и человека |
Супероксиддисмутаза (КФ 1.15.1.1.) |
32 000 |
Дисмутация супероксида |
Эритроциты ткани животных |
Тирозиназа (КФ 1.14.18.1) |
46 000 |
Гидроксилирование тирозина, синтез меланина |
Кожа, меланома, ткани животных |
Аминоксидаза, гистаминаза (КФ 1.4.3.6) |
180 000– 195 000 |
Окисление первичных аминов |
Плазма крови, почки |
Аминооксидаза (Лизилоксидаза) (КФ 1.16.3.1) |
30 000– 60 000 |
Окисление γ-аминогруппы лизина |
Плацента человека, аорта, хрящ человека |
Цитохромоксидаза (КФ 1.9.3.1) |
140 000 |
Терминальное окисление |
Митохондрии животных и человека |
Дофамин-β-гидроксилаза (КФ 4.1.1.28) |
290 000 |
Гидроксилирование дофамина, синтез адреналина |
Плазма крови человека |
Этой ролью она обязана особым свойствам как переходного металла. Имея два обычных валентных состояния, она, в зависимости от природы и расположения лигандов, позволяет медьсодержащим белкам охватывать широкий интервал окислительно-восстановительных потенциалов, а также обратимо связывать кислород и окись углерода. Ряд белков содержит четыре и более ионов меди, входящих в состав центров обоих типов, их характеризует необычно интенсивная голубая окраска, благодаря которой они получили название голубых или мультимидных оксидаз.
Важную физиологическую функцию выполняет фермент супероксиддисмутаза – СОД (КФ 1.15.1.1), ускоряя реакцию разложения супероксид-иона, возникающего при свободнорадикальном окислении веществ в клетке. Этот радикал очень активно взаимодействует с разными компонентами клетки, разрушая их. Супероксиддисмутаза превращает анион-радикал в молекулярный кислород и в пероксид водорода, при этом атом меди фермента выступает и окислителем, и восстановителем.
Важную роль медь играет в процессе созревания коллагена на этапе формирования поперечных сшивок между молекулами тропоколлагена [1, 2].
Дефицит меди приводит к недостаточности медь-зависимых ферментов и проявляется в нарушениях деятельности нервной системы, депигментации кожи и гипоплазии соединительной ткани.
Средний пищевой рацион человека должен содержать 5–7 мг/сут меди. Дефицит меди в первую очередь сказывается на активности медь-зависимых ферментов, при этом наблюдаются специфические нарушения в обмене веществ, затрагивающие в том числе антиоксидантный статус. Для купирования дефицита меди можно использовать продукты богатые медью, особенно шоколад, какао, авокадо, морепродукты, печень, а также медьсодержащие препараты и биологически активные добавки к пище. В рационе каждого человека ежедневно присутствуют хлебобулочные изделия, содержащие медь [3].
Целью настоящего исследования было проведение оценки обеспеченности медью организма оренбуржцев на основании содержания данного микроэлемента в волосах и активности медь-зависимой супероксиддисмутазы слюны.
Материалы и методы исследования
Экспериментальная часть работы проводилась на базе биохимической лаборатории ФГБОУ ВО ОГПУ и межкафедральной комплексной аналитической лаборатории ФГБОУ ВО «Оренбургский ГАУ».
Исследование проводили в группе взрослых людей разного возраста (21–71), длительно проживающих на территории Оренбургской области и включавшей девять человек. В качестве объектов исследования использовали образцы волос и смешанную слюну, взятую натощак.
Содержание меди в волосах определяли на атомно-абсорбционном спектрометре «МГА-915». Метод измерения основан на резонансном поглощении света свободными атомами металлов, возникающем при пропускании света через слой атомного пара в графитовой печи атомно-абсорбционного спектрометра «МГА-915». Содержание металлов определяется величиной интегрального аналитического сигнала и рассчитывается по предварительно установленной градуировочной зависимости.
Активность супероксиддисмутазы определяли в смешанной слюне спектрофотометрическим методом, основанным на способности фермента тормозить реакцию аутоокисления адреналина в щелочной среде. Скорость реакции оценивают спектрофотометрически по величине оптической плотности накапливающегося продукта аутоокисления адреналина, имеющего максимум поглощения при длине волны 347 нм, образующегося в отсутствии и присутствии исследуемых препаратов, и проводят расчёт активности в процентах ингибирования [4]. Расчет активности фермента проводили по формуле
где ΔЕ опыта – экстинкция в опыте, ΔЕ контроля – экстинкция в контроле.
Результаты исследования и их обсуждение
В волосах происходит концентрирование микроэлементов, в отличие от крови, которая в основном выполняет в организме транспортную функцию. Волосы наиболее полно отражают уровень содержания как токсичных (свинец, кадмий, мышьяк и т.д.), так и жизненно необходимых элементов (цинк, селен, железо и т.д.). Исследование микроэлементов в волосах дает возможность выявить наличие патологических процессов на предклинической стадии, что позволяет внести соответствующую корректировку в профилактику заболевания. Содержание меди в волосах населения Оренбургской области колеблется в пределах 11,08–55,54 мкг/г в зависимости от района проживания [5, 6].
Референтные значения данного показателя у взрослых здоровых людей по современным данным колеблются от 9–10 до 40–50 мкг/г. Как видно из табл. 2, содержание меди в волосах представителей обследуемой группы колеблется от 12 до 20 мкг/г, что согласуется с референтными значениями [7].
Таблица 2
Содержание меди в волосах обследуемой группы оренбуржцев
№ |
Возраст |
Пол |
Содержание меди, мкг/г |
1 |
46 |
Ж |
20,11 |
2 |
25 |
Ж |
12,24 |
3 |
22 |
Ж |
18,05 |
4 |
25 |
М |
16,17 |
5 |
50 |
Ж |
18,41 |
6 |
71 |
Ж |
14,52 |
7 |
21 |
Ж |
18,32 |
8 |
21 |
Ж |
17,07 |
9 |
21 |
Ж |
19,37 |
Референтные значения, мкг/г |
10,0–30,0 |
Таким образом, результаты атомно-абсорбционной фотометрии образцов волос не обнаружили у испытуемых отклонений в содержании меди в организме – гипо- или гиперкупреоза.
На следующем этапе работы представлялось актуальным проанализировать взаимосвязь между содержанием меди в элементном портрете и активностью медь-зависимой супероксиддисмутазы слюны представителей обследуемой группы.
Супероксиддисмутаза – широко распространенный в природе антиоксидантный фермент, проявляющий активность в диапазоне рН от 7,6 до 10,5 с оптимумом рН = 7,8.
В стандартной методике измерение активности СОД по реакции торможения аутоокисления адреналина проводится при рН 10–10,6 [4]. Этот метод используется для определения СОД эритроцитов. В слюне содержится внеклеточная форма СОД, отличающаяся от СОД эритроцитов. Применение этой стандартной методики в нашем эксперименте выявило ряд проблем: неразбавленная слюна полностью ингибировала аутоокисление адреналина, при разбавлении слюны аутоокисление протекало, но активность фермента была очень низкой. Мы предположили, что такая низкая активность фермента при данном значении рН среды (10,6) связана с тем, что это крайняя верхняя граница диапазона рН действия супероксиддисмутазы. В связи с этим представлялось актуальным исследовать оптимальные условия для определения активности СОД слюны.
Целью первого этапа исследования являлся подбор оптимальных условий для определения активности супероксиддисмутазы слюны как показателя антиоксидантного статуса организма. В качестве объекта исследования была отобрана смешанная слюна практически здоровых людей, взятая натощак. Слюну разводили в четыре раза и фильтровали через обеззоленный фильтр. В дальнейшие эксперименты брали фильтрат.
В кварцевую кювету (объём 4 мл, длина оптического пути 10 мм) помещали 3 мл буферного раствора с заданным значением рН (7,9; 8,5; 9,9), вносили 150 *l 0,1 % раствора адреналина гидрохлорида, аликвоту (10, 20, 30, 40, 45, 50 µl) фильтрата слюны. Измерения проводили при длине волны 347 нм (спектрофотометр Apel (Япония), регистрировали показания прибора через 30, 60, 90, 120, 150, 180 секунд инкубирования. Контролем служила проба с раствором адреналина без слюны.
Для создания рН готовили 0,1 М буферные растворы: рН = 9,9 – фосфатно-аммонийный буфер, 8,5 – карбонатный буфер), 7,9 – фосфатно-аммонийный буфер. При всех используемых значениях рН было отмечено выраженное торможение аутоокисления адреналина под действием СОД, причем тормозящее действие фермента наиболее сильно сказывалось в первые 30 секунд инкубирования. На рисунке приведена типичная кинетика изменения оптической плотности исследуемых проб при рН = 7,9. В контрольных опытах (без слюны) отмечалось плавное возрастание оптической плотности вследствие образования адренохрома в процессе аутоокисления адреналина. В то же время в опытах с добавлением проб слюны рост оптической плотности замедлялся вследствие торможения аутоокисления адреналина под действием супероксиддисмутазы. Особенно ярко это проявлялось в течение первой минуты инкубирования.
Типичная кинетика изменения оптической плотности исследуемых проб (рН = 7,9, в опыт взято 40 μl разбавленной слюны)
В табл. 3 отражены результаты определения активности СОД в различных средах, отличающихся значением рН по ингибированию аутоокисления адреналина в адренохром. Результаты выражены в процентах ингибирования аутоокисления по отношению к контрольным пробам, о котором судили по степени возрастания оптической плотности исследуемых растворов при 347 нм (ультрафиолетовая лампа СФ).
Таблица 3
Активность СОД при различных значениях рН ( % ингибирования)
Время инкубирования, секунды |
Активность СОД ( %) |
||
рН 7,9 |
рН 8,5 |
рН 9,9 |
|
30 |
100 |
100 |
100 |
60 |
100 |
50 |
50 |
120 |
70 |
70 |
70 |
180 |
50 |
50 |
50 |
Как видно из табл. 3, наилучший эффект СОД слюны проявляла при рН = 7,9. Подобная зависимость была отмечена при использовании других аликвот фильтрата слюны.
Таким образом, в ходе проведенного эксперимента нами были подобраны оптимальные условия для исследования активности СОД слюны: 0,1 М фосфатно-аммонийный буфер (рН = 7,9), разведение слюны (1:3), соотношение реагентов (3 мл буферного раствора, 150 µl 0,1 %-ного раствора адреналина гидрохлорида, 40 µl фильтрата слюны), то есть разработана методика, адаптированная к особенностям СОД слюны.
На втором этапе исследования, применяя данную методику, мы определяли уровень активности СОД слюны у представителей обследуемой группы. Результаты отражены в табл. 4.
Таблица 4
Активность СОД слюны в обследуемой группе
Обследуемый |
Активность СОД ( %) |
|||
№ |
Пол |
Возраст |
60 сек |
180 сек |
1 |
Ж |
46 |
100 |
50 |
2 |
Ж |
22 |
100 |
50 |
3 |
М |
25 |
100 |
70 |
4 |
Ж |
25 |
100 |
50 |
5 |
Ж |
21 |
100 |
70 |
6 |
Ж |
21 |
100 |
70 |
Проведенное исследование свидетельствует об адекватной обеспеченности медью организма представителей обследуемой группы оренбуржцев и достаточной активности медь-зависимой супероксиддисмутазы – важнейшего компонента антиоксидантной защиты организма.
Таким образом, в экспериментальной части нашей работы проведен анализ присутствия меди в микроэлементном портрете оренбуржцев, адаптирована методика определения активности супероксиддисмутазы для слюны, определена активность супероксиддисмутазы слюны в обследуемой группе как показателя антиоксидантного статуса и обеспеченности медью.
Библиографическая ссылка
Карнаухова И.В., Ширяева О.Ю. ИССЛЕДОВАНИЕ СОДЕРЖАНИЯ МЕДИ И АКТИВНОСТИ МЕДЬ-ЗАВИСИМОЙ СУПЕРОКСИДДИСМУТАЗЫ В ОРГАНИЗМЕ ЧЕЛОВЕКА // Научное обозрение. Биологические науки. – 2018. – № 2. – С. 10-14;URL: https://science-biology.ru/ru/article/view?id=1096 (дата обращения: 23.11.2024).